La geometria e la dinamica della segregazione cellulare 3D sono governate dalla regolazione della tensione superficiale dei tessuti

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Jun 04, 2023

La geometria e la dinamica della segregazione cellulare 3D sono governate dalla regolazione della tensione superficiale dei tessuti

Communications Biology volume 6, Numero articolo: 817 (2023) Cita questo articolo 521 Accessi 1 Dettagli metriche altmetriche La morfogenesi e il modello dei tessuti durante lo sviluppo comportano la segregazione di

Biologia delle comunicazioni volume 6, numero articolo: 817 (2023) Citare questo articolo

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La morfogenesi e il modello dei tessuti durante lo sviluppo comportano la segregazione dei tipi cellulari. La segregazione è guidata da tensioni superficiali tissutali differenziali generate dai tipi cellulari attraverso il controllo della formazione del contatto cellula-cellula regolando l'adesione e le tensioni corticali cellulari basate sulla contrattilità dell'actomiosina. Utilizziamo tipi di cellule di tessuto vertebrato e progenitori dello strato germinale del pesce zebra come modelli in vitro di segregazione eterotipica tridimensionale e abbiamo sviluppato un'analisi quantitativa della loro dinamica basata sulla microscopia time-lapse 3D. Mostriamo che l'inibizione generale della contrattilità dell'actomiosina da parte dell'inibitore della chinasi Rho Y27632 ritarda la segregazione. L'inibizione specifica del tipo cellulare dell'attività della miosina2 non muscolare mediante sovraespressione dell'inibitore dell'assemblaggio della miosina S100A4 riduce la tensione superficiale del tessuto, manifestata in una diminuzione della compattazione durante l'aggregazione e nella geometria invertita osservata durante la segregazione. Lo stesso si osserva quando esprimiamo un'isoforma di Rho chinasi costitutivamente attiva per mantenere ubiquitariamente elevata la contrattilità dell'actomiosina alle interfacce cellula-cellula e cellula-mezzo e quindi ignorando la regolazione specifica dell'interfaccia delle tensioni corticali. La regolazione della tensione superficiale dei tessuti può diventare uno strumento efficace nell’ingegneria dei tessuti.

L'auto-organizzazione dei tessuti, come la segregazione dei tipi cellulari in base alle loro proprietà biomeccaniche, è una componente importante dello sviluppo embrionale nei metazoi1,2,3. Esempi ben caratterizzati includono lo sviluppo del germoglio degli arti di pulcino4,5, la formazione di blastocisti nel topo6,7,8 nonché la gastrulazione e la formazione dello strato germinale negli embrioni di pesce zebra e Xenopus9,10,11,12. I campi emergenti dell’ingegneria tissutale e della biofabbricazione13 possono anche sfruttare i meccanismi (scoperti) di auto-organizzazione.

Su un lungo arco temporale, i tessuti si comportano come fluidi viscosi caratterizzati da una specifica tensione superficiale tissutale (TST), come manifestazione della coesione, che è determinata dall'adesione cellulare e dalla tensione corticale cellulare. I contributi relativi dell'adesione e della tensione corticale al TST sono affrontati da due ipotesi: l'ipotesi di adesione differenziale (DAH)4,14,15 e l'ipotesi di tensione interfacciale differenziale (DITH)16. Differenze specifiche nel TST sono considerate come i principali contributori alla segregazione/smistamento cellulare in vitro e in vivo e alla stratificazione dei tessuti durante lo sviluppo, sebbene altri meccanismi come la migrazione cellulare collettiva17,18 e la polarizzazione10 o l'osmolarità19 svolgano chiaramente un ruolo cruciale.

Nel corso della segregazione in vitro di diversi tipi cellulari, il tipo cellulare caratterizzato da un TST più alto tende a segregare all'interno, avvolto o fagocitato da cellule con TST più basso4,12,14,20,21,22. Per generare un TST elevato, la tensione interfacciale cellula-mezzo, costituita solo dalla tensione corticale cellulare, deve essere aumentata mentre la tensione interfacciale cellula-cellula deve essere diminuita, poiché il TST dipende dal rapporto tra interfaccia cellula-mezzo e cellula-cellula. tensioni dell’interfaccia cellulare. La tensione interfacciale cellula-cellula è composta principalmente da tensione corticale generata dalla contrazione dell'actomiosina mentre il contributo (negativo) della tensione di adesione è basso; pertanto la riduzione della tensione interfacciale cellula-cellula richiede una riduzione attiva della tensione corticale locale23.

È stata osservata deplezione della miosina 2 non muscolare (NM2) alle interfacce cellula-cellula in concomitanza con l'apparente accumulo di NM2 e actina all'interfaccia cellula-mezzo nei progenitori dello strato germinale in vitro e in vivo21,23. È stato dimostrato che la tensione meccanica corticale promuove la localizzazione corticale di NM2 negli embrioni di Drosophila con NM2 stesso che agisce come meccanosensore in questo processo di reclutamento24,25. La regolazione differenziale interfaccia-specifica della tensione corticale è una componente cruciale della generazione del TST e si ritiene che sia diretta dalla segnalazione proveniente dai complessi di adesione cellula-cellula al citoscheletro26. Questa via di segnalazione inizia dalle molecole di adesione della caderina che si legano alle caderine di un'altra cellula in contatto e reclutano le catenine intracellulari per formare un complesso. Tra gli altri, qui viene reclutata e attivata la p120-catenina (catenina-delta1), che inibisce RhoA, portando all'inattivazione della Rho chinasi e all'ulteriore inibizione a valle della contrattilità dell'actomiosina27,28,29,30,31.

 30) for several hours until final spatial configurations of the segregated domains were reached. In all experiments, PFK cells were segregated inside the emerging spheroid aggregate while EPC cells formed the outer domain (Fig. 2a, Supplementary Movie 3). Next, we tested A431 human epithelial carcinoma cells and HT1080 human fibrosarcoma cells in mixtures and observed their segregation in aggregates (n > 20) until reaching the final spatial configurations of homotypic domains. Segregation dynamics was slower than observed for PFK + EPC fish keratinocytes, nevertheless, A431 epithelial cells were always segregated inside and HT1080 cells formed the enveloping outer layer of spheroids (Fig. 2b, Supplementary Movie 4). Finally, we used zebrafish (Danio rerio) progenitor cells, dissociated from induced ectoderm or mesoderm, for basic segregation experiments. Aggregates (n > 30) of mixed ectoderm and mesoderm cells were imaged for several hours and eventually ectoderm cells segregated to the inside while mesoderm cells to the outside (Fig. 2c, Supplementary Movie 5), in line with expectations based on earlier data showing higher homotypic contact strengths for ectoderm cells compared to mesoderm cells, measured after several minutes of contact time23,33./p> 1000 points in a single image. This analysis is repeated in all images of the z-stack of the time series originally recorded at 10 min intervals for various total durations ranging from 10 to 50 h, yielding 60 to 150 consecutive data points, specified for the given experimental condition. The number of cell clusters (i.e. individual 3D cell cultures) analyzed this way as independent entities are represented by the n number assigned to the specific experimental condition (cell type, treatment) and included in the legend of the relevant figure graph. These figure graphs show mean values +/− standard error of the mean (SEM) values calculated from cluster size data averaged from n > 1000 data points measured in 6 to10 z-planes for n number of independent cell cultures specified, and these are shown as individual data points in data series containing a time series 60 to 150 data points, depending on the specific experiment. For details see Supplementary Data 2 and Supplementary Data 4./p>